1. 配置1%的瓊脂糖凝膠50ml,稱量瓊脂粉0.5g,5xTBE加多少
一般用TAE吧，你都說是5*，當然就是10mL再加40mL水啊，要是1*的直接加50就行了，小誤差不要太在意。
2. 瓊脂糖凝膠配方
瓊脂糖凝膠是以瓊脂糖為支持介質制備的凝膠。瓊脂糖分為一般瓊脂糖和經化學修飾後熔點降低的低熔點瓊脂 糖，瓊脂糖的熔點在62〜65°C之間，融化後在37°C下可維持液態數小時，30°C時凝固成膠。多用於對染色體DNA在凝膠內進行原位酶切及DNA片段回收。瓊脂糖凝膠 由於孔徑大常用於大分子蛋白質、DNA的分離。[1]
中文名
瓊脂糖凝膠
外文名
Agarose gel
顆粒大小
45-165um
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聚丙烯醯胺凝膠
瓊脂粉的用法和用途
凝膠電泳
瓊脂糖電泳圖怎麼看
基本內容
瓊脂糖凝膠agarose gel
儲藏溫度:常溫
商品名很多，常見的有，Sepharose（瑞典，pharmacia ），Bio-Gel-A（美國Bio-Rad）等。瓊脂糖凝膠是依靠糖鏈之間的次級鏈如氫鍵來維持網狀結構，網狀結構的疏密依靠瓊脂糖的濃度。一般情況下，它的結構是穩定的，可以在許多條件下使用（如水，pH4-9范圍內的鹽溶液）。瓊脂糖凝膠在40℃以上開始融化，也不能高壓消毒，可用化學滅菌活處理。
瓊脂糖 Agarose，縮寫為AG，是瓊脂中不帶電荷的中性組成成份，也譯為瓊膠素或瓊膠糖。瓊膠糖化學結構由β-D-吡喃半乳糖(1-4)連接3,6-脫水α-L-吡喃半乳糖基單位構成.
把瓊脂糖，即幾乎不含硫酸根的主要成分為多糖的瓊脂，溶於熱水，冷卻製成的凝膠。製成的小顆粒用於凝膠過濾。適於用sephadex不能分級分離的大分子的凝膠過濾，若使用5%以下濃度的凝膠，也能夠分級分離細胞顆粒、病毒等。利用其吸附性小的特點，有時用它代替瓊脂、以作為免疫電泳或凝膠內沉降反應的支持物。
3. 如何配製2%瓊脂糖溶液
秤一克瓊脂糖，加100毫升蒸餾水。
但是，一般跑電泳的時候，需要加tae緩沖液，50×tae加2毫升，再加98毫升蒸餾水。
配瓊脂糖，差一兩毫升沒什麼影響的，我們實驗室用的是百分之二的。
4. 瓊脂糖凝膠的配製
稱量、溶膠、倒膠、拔梳。
配置步驟如下：
1、稱量，小膠板0.8%的膠需要瓊脂粉0.104gTBE13mL。
2、熔膠，將所稱量的瓊脂粉與TBE在錐形瓶中混合，在微波爐內反復加熱2到3次至瓊脂粉溶解並無氣泡。
3、倒膠，干凈的膠槽內擺好梳子，往膠內滴加1uL左右核酸染料，混勻，待冷卻至不燙手，輕輕倒入膠板內。
4、拔梳待大約2分鍾即可。
5. 瓊脂糖凝膠怎麼配製
把瓊脂糖，即幾乎不含硫酸根的主要成分為多糖的瓊脂，溶於熱水，倒入玻璃杯中，冷卻製成的凝膠。融化後在37°C下可維持液態數小時，30°C時凝固成膠。即完成瓊脂糖凝膠的配置。
製成的小顆粒用於凝膠過濾，適於用sephadex不能分級分離的大分子的凝膠過濾，若使用5%以下濃度的凝膠，也能夠分級分離細胞顆粒、病毒等。利用其吸附性小的特點，有時用它代替瓊脂、以作為免疫電泳或凝膠內沉降反應的支持物。
(5)如何配置瓊脂糖溶液擴展閱讀：
瓊脂糖分為一般瓊脂糖和經化學修飾後熔點降低的低熔點瓊脂糖，瓊脂糖的熔點在62〜65°C之間，多用於對染色體DNA在凝膠內進行原位酶切及DNA片段回收。瓊脂糖凝膠由於孔徑大常用於大分子蛋白質、DNA的分離。
瓊脂由瓊脂糖和瓊脂果膠兩部分組成：
作為膠凝劑的瓊脂糖是不含硫酸酯的非離子型多糖，是形成凝膠的組分，其大分子鏈鏈節著1，3苷鍵交替相連的β-D-半乳糖殘基和3,6-內醚-L-半乳糖殘基 。而瓊脂果膠是非凝膠部分，是帶有硫酸酯、葡萄糖醛酸和丙酮酸醛的復雜多糖，也是商業提取中力圖去掉的部分。
商品瓊脂一般帶有2%～7%的硫酸酯，0%～3%的丙酮酸醛及1%～3%的甲乙基。在工業上的瓊脂 色澤由白到微黃，具有膠質感，無氣味或有輕微的特徵性氣味，瓊脂不溶於冷水，易溶於沸水。
瓊脂系選用優質天然石花菜、江蘺菜、紫菜等海藻為原料，採用科學方法精煉提純的天然高分子多糖物質。
瓊脂為親水性膠體，分有條狀和粉末狀，不溶於冷水，易溶於熱水。瓊脂在工業上具有獨特的重要性，瓊脂的濃度即使低至1%仍能形成相當穩定的凝膠，是食品工業、化學工業、醫學科研所必需之原料。
6. 低熔點瓊脂糖凝膠怎麼配製
搜索了很久終於找到啦！哈哈！不要太感謝哥哈！1． 瓊脂糖凝膠的制備⑴瓊脂糖凝膠的制備：稱取0.3g瓊脂糖，置於三角瓶中，加入30ml TBE或TAE緩液，置於三角瓶中，加入30ml TBE或TAE緩液，置於三角瓶中，加入30ml TBE或TAE緩液，將該三角瓶置於微波爐加熱至瓊脂糖溶解。將冷卻至65℃左右的瓊脂糖凝膠液，加入溴化乙錠，充分混勻。⑵膠板的制備：①取有機玻璃內槽，洗凈、晾乾；②將有機玻璃內槽置於一水平位置模具上，安好擋板，放好梳子。吸取少量瓊脂糖溶液封固膠膜邊緣，任其凝固，在距離底板0.5～1.0mm的位置上放置梳子，以便加入瓊脂糖後可以形成完好的加樣孔。如果梳子距離玻璃板再近，則拔出梳子時孔底將有破裂的危險，破裂後將使樣品在凝膠與玻璃板之間滲漏。③將剩餘的溫熱瓊脂糖溶液倒入膠膜中，使膠液緩慢地展開，直到在整個有機玻璃板表面形成均勻的膠層。凝膠的厚度在3～5mm之間，檢查一下梳子的齒下或齒間是否有氣泡。 ④室溫下靜置30min左右，待凝固完全後，輕輕拔出梳子，在膠板上即形成相互隔開的上樣孔。制好膠後將鋪膠的有機玻璃內槽放在含有0.5～1×TAE（Tris-乙酸） 或TBE（Tris-硼酸）工作液的電泳槽中使用，沒過膠面1mm以上。（註：溴化乙錠是一種強烈的誘變劑並有中度毒性。使用含有該染料的溶液時必須戴手套。使用完後應該進行凈化處理。通常用水配製成10mg／ml的貯存液在室溫下避光儲存，使用終濃度為0.5μg／ml。）
7. 配置瓊脂糖膠時,可以用蒸餾水和高濃度的TAE液嗎
1.用蒸餾水將制膠工具洗干凈 准備好制膠平板 用瓊脂將模具邊緣封閉 架好梳子
2.根據要分離的樣品（DNA）大小配製合適濃度的瓊脂凝膠 准確的稱取一定量的瓊脂糖乾粉 加入到合適體積的錐形瓶中 加入一定量的電泳緩沖液（30ml左右TAE） 放入到微波爐內加熱融化 冷卻片刻（不燙手即可）
3.融化後的瓊脂溶液搖晃混勻 倒入電泳槽中 等其凝固
4.室溫下凝固30-40min左右 小心的拔出梳子 取出凝固好的凝膠放入電泳槽內 准備上樣
5.在電泳槽中倒入電泳緩沖液（TAE）沒過膠面1mm左右 去除膠孔內的氣泡
6.上樣 5ulDNA樣品加入1ul上樣緩沖液（loading buffer）和1ul的染料 用搶混勻後加入到凝膠孔內
.上樣結束 接通電源 紅色正極 黑色負極 DNA樣品有負極往正極運動 加樣孔側為負 40-50v電壓 電壓30敏左右即可（< 40min）
8.電壓結束 關閉電源 凝膠成像儀上觀察電壓位置並比對marker判斷大小
8. 瓊脂糖凝膠是用什麼液體配置的
主要的原因是保持瓊脂凝膠和周圍的緩沖體系保持相同的pH值，當然這種pH值是前人優化過的，最有利於核酸分離和穩定的pH條件；如果凝膠和緩沖體系的pH存在較大的差異，勢必會影響核酸的分離效果。
9. 我想問跑瓊脂糖電泳時，loading buffer 的配方
一般瓊脂糖凝膠loading buffer 配成10倍貯存液，如下：
20%（w/v) Ficoll 400
0.1mol/L Na2EDTA,PH8.0
1.0%(w/v)SDS
0.25%(w/v)溴酚蘭
0.25%(w/v)二甲苯青
注意溶液為電泳緩沖液，用時加入上樣體積的十分之一就行了
另外，買DNA marker 時一般都會附送loading buffer